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豊かな見た目の装飾的な観葉植物は高く評価されています。これを実現する一つの方法は、植物成長調整剤植物成長管理ツールとして。この研究は、シェフレラ・ドワーフ（観賞用の観葉植物）に葉面散布を施して実施された。ジベレリン酸ミスト灌漑システムを備えた温室で、ジベレリン酸とベンジルアデニンホルモンを散布した。矮性シェフレラの葉に、15日ごとに3段階に分け、0、100、200 mg/lの濃度でホルモンを散布した。実験は、4回の反復を含む完全ランダム化計画で要因ベースで実施した。濃度200 mg/lのジベレリン酸とベンジルアデニンの組み合わせは、葉の数、葉面積、植物の高さに有意な効果があった。この処理により、光合成色素の含有量も最高になった。さらに、可溶性炭水化物と還元糖の比率が最も高かったのは、ベンジルアデニン100および200 mg/Lと、ジベレリン酸+ベンジルアデニン200 mg/Lであった。段階的回帰分析により、根の容積がモデルに最初に入力された変数であり、変動の44%を説明することが示された。次の変数は生根量で、二変量モデルは葉数変動の63%を説明しました。葉数への最も大きなプラス効果は生根量（0.43）で、これは葉数（0.47）と正の相関を示しました。結果は、濃度200mg/lのジベレリン酸とベンジルアデニンが、ユリノキ（Liriodendron tulipifera）の形態的成長、クロロフィルおよびカロテノイドの合成を有意に改善し、糖および可溶性炭水化物の含有量を減少させたことを示しました。
シェフレラ・アルボレスケンス（ハヤタ）メルは、中国と台湾原産のウコギ科の常緑観賞植物です1。この植物はしばしば観賞用植物として栽培されますが、そのような条件では1株しか育ちません。葉は5～16枚の小葉を持ち、各小葉の長さは10～20 cm2です。矮性シェフレラは毎年大量に販売されていますが、現代の園芸方法はめったに使用されていません。そのため、園芸製品の成長と持続的生産を改善するための効果的な管理ツールとして植物成長調整剤を使用することに、より多くの注意を払う必要があります。今日では、植物成長調整剤の使用は大幅に増加しています3,4,5。ジベレリン酸は、植物の収量を増やすことができる植物成長調整剤です6。その既知の効果の1つは、茎と根の伸長、葉面積の増加など、栄養成長の刺激です7。ジベレリンの最も重要な効果は、節間の延長による茎の高さの増加です。ジベレリンを産生できない矮性植物にジベレリンを葉面散布すると、茎の伸長と草丈の増加が見られます8。花と葉に500 mg/lの濃度のジベレリン酸を葉面散布すると、草丈、葉数、葉幅、葉長が増加します9。ジベレリンは様々な広葉植物の成長を促進することが報告されています10。ヨーロッパアカマツ（Pinussylvestris）とシロトウヒ（Piceaglauca）の葉にジベレリンを散布したところ、茎の伸長が観察されました11。
ある研究では、3 種類のサイトカイニン植物成長調整剤がユリの側枝形成に及ぼす影響を調べました。季節による影響を調べるため、秋と春に実験を行いました。結果、カイネチン、ベンジルアデニン、2-プレニルアデニンは追加の枝の形成に影響を与えないことが示されました。しかし、500 ppm のベンジルアデニンでは、秋の実験と春の実験でそれぞれ 12.2 と 8.2 の補助枝が形成されたのに対し、コントロール植物では 4.9 と 3.9 の枝が形成されたことがわかりました。研究では、夏の処理の方が冬の処理よりも効果的であることが示されています12。別の実験では、直径 10 cm の鉢で Peace Lily var. Tassone の植物に 0、250、500 ppm のベンジルアデニンを処理しました。結果、土壌処理によって、コントロール植物やベンジルアデニン処理植物と比較して、追加の葉の数が大幅に増加することが示されました。処理の 4 週間後に新しい追加の葉が観察され、処理の 8 週間後に最大の葉の生成が観察されました。処理後20週間で、土壌処理した植物は、処理前と比較して草丈の増加が少なかった13。クロトンでは、ベンジルアデニン濃度20 mg/Lで草丈と葉数が有意に増加することが報告されている14。カラーでは、ベンジルアデニン濃度500 ppmで枝数が増加したのに対し、対照群では枝数が最も少なかった15。本研究の目的は、観賞用植物であるシェフレラ・ドワーファの生育を改善するために、ジベレリン酸とベンジルアデニンの葉面散布を検討することである。これらの植物成長調整剤は、商業栽培者が年間を通じて適切な生産計画を立てるのに役立つ可能性がある。ユリノキの生育を改善するための研究は実施されていない。
この研究は、イランのジロフトにあるイスラム・アーザド大学の屋内植物研究温室で実施されました。高さ25±5cmの矮性シェフレラの均一な根株を準備し（実験の6ヶ月前に増殖）、鉢に播種しました。鉢は直径20cm、高さ30cmの黒色のプラスチック製でした16。
この研究で使用した培地は、ピート、腐植土、洗浄砂、籾殻を 1:1:1:1 (体積比) の比率で混合したもの 16 です。排水のために鉢の底に小石の層を敷きます。晩春と夏の温室内の平均日中および夜間温度は、それぞれ 32±2°C と 28±2°C でした。相対湿度は 70% を超えます。灌漑にはミストシステムを使用します。平均して、植物には 1 日に 12 回水やりをします。秋と夏には、1 回の灌漑時間は 8 分、灌漑間隔は 1 時間です。播種後 2、4、6、8 週間後に、微量栄養素溶液 (Ghoncheh Co.、イラン) を 3 ppm の濃度で使用して、植物を同様に 4 回栽培し、そのたびに 100 ml の溶液を灌漑しました。栄養溶液には、N 8 ppm、P 4 ppm、K 5 ppm、および微量元素の Fe、Pb、Zn、Mn、Mo、B が含まれています。
ジベレリン酸と植物成長調整剤ベンジルアデニン（シグマ社製）を0、100、200 mg/Lの3濃度で調製し、15日間隔で3段階に分けて植物の芽に散布した17。溶液にはTween 20（0.1%）（シグマ社製）を使用し、持続性と吸収率を高めた。早朝、噴霧器を用いてユリノキ（Liriodendron tulipifera）の芽と葉にホルモン剤を散布する。植物には蒸留水を散布する。
異なる処理において、植物の高さ、茎の直径、葉面積、クロロフィル含有量、節間数、二次枝の長さ、二次枝の数、根の容積、根の長さ、葉、根、茎および乾燥新鮮物質の質量、光合成色素含有量（クロロフィル a、クロロフィル b、総クロロフィル、カロテノイド、総色素）、還元糖および可溶性炭水化物を測定しました。
若い葉のクロロフィル含有量は、散布後180日目にクロロフィルメーター（Spad CL-01）を使用して午前9時30分から10時まで（葉の鮮度のため）測定しました。また、葉面積も散布後180日目に測定しました。各ポットから茎の上部、中央、下部から3枚の葉を秤量します。次に、これらの葉をA4用紙に型紙として使用し、結果として生じるパターンを切り取ります。A4用紙1枚の重量と表面積も測定しました。次に、ステンシルされた葉の面積を比率を使用して計算します。さらに、根の体積はメスシリンダーを使用して決定しました。各サンプルの葉の乾燥重量、茎の乾燥重量、根の乾燥重量、および全乾燥重量を、72°Cで48時間オーブン乾燥させて測定しました。
クロロフィルおよびカロテノイドの含有量は、リヒテンターラー法18によって測定しました。生葉0.1gを80%アセトン15mlを入れた磁器製乳鉢で粉砕し、ろ過後、分光光度計を用いて波長663.2、646.8、470 nmで光学濃度を測定しました。機器は80%アセトンで校正してください。光合成色素の濃度は、以下の式を用いて算出します。
これらのうち、Chl a、Chl b、Chl T、Carはそれぞれクロロフィルa、クロロフィルb、総クロロフィル、カロテノイドを表します。結果はmg/ml植物で示されています。
還元糖は、ソモギー法19 を使用して測定しました。これを行うには、0.02 g の植物の芽を 10 ml の蒸留水とともに磁器製乳鉢ですりつぶし、小さなグラスに注ぎます。ガラスを沸騰させてから、Whatman No. 1 ろ紙を使用して内容物をろ過して植物抽出物を得ます。各抽出物 2 ml を試験管に移し、2 ml の硫酸銅溶液を加えます。試験管を脱脂綿で覆い、100°C の湯浴で 20 分間加熱します。この段階で、アルデヒド単糖の還元により Cu2+ が Cu2O に変換され、試験管の底にサーモンピンク (テラコッタ色) が見えます。試験管が冷めた後、2 ml のリンモリブデン酸を加えると、青色が現れます。色が試験管全体に均一になるまで試験管を激しく振ります。分光光度計を使用して、600 nm での溶液の吸光度を読み取ります。
標準曲線を用いて還元糖濃度を計算します。可溶性炭水化物の濃度は、Fales法20により測定しました。この方法では、0.1 gの芽を2.5 mlの80%エタノールと混合し、90 °Cで60分間（各30分間の2段階）加熱処理して可溶性炭水化物を抽出しました。抽出物をろ過し、アルコールを蒸発させます。得られた沈殿物を2.5 mlの蒸留水に溶解します。各サンプル200 mlを試験管に注ぎ、アントロン指示薬5 mlを加えます。混合物を90 °Cのウォーターバスに17分間置き、冷却後、625 nmで吸光度を測定しました。
この実験は、4回の複製を含む完全ランダム化設計に基づく因子実験でした。分散分析の前に、PROC UNIVARIATE 手順を使用してデータ分布の正規性を調べました。統計分析は、収集された生データの品質を理解するための記述統計分析から始まりました。計算は、大きなデータセットを簡素化および圧縮して解釈しやすくするように設計されています。続いて、より複雑な分析が実行されました。データセット間の差を判断するために、平均二乗と実験誤差を計算するために、SPSS ソフトウェア (バージョン 24、IBM Corporation、米国ニューヨーク州アーモンク) を使用して Duncan の検定が実行されました。有意水準 (0.05 ≤ p) で平均値間の差を識別するために、Duncan の多重検定 (DMRT) が使用されました。異なるパラメータのペア間の相関を評価するために、SPSS ソフトウェア (バージョン 26、IBM Corp.、米国ニューヨーク州アーモンク) を使用してピアソン相関係数 (r) が計算されました。さらに、SPSSソフトウェア（v.26）を用いて線形回帰分析を実施し、2年目の変数の値に基づいて1年目の変数の値を予測しました。一方、矮性シェフレラの葉に決定的な影響を与える形質を特定するために、p < 0.01のステップワイズ回帰分析を実施しました。モデル内の各属性の直接的および間接的な影響を決定するために、パス分析を実施しました（変動をより適切に説明する特性に基づく）。上記のすべての計算（データ分布の正規性、単純相関係数、ステップワイズ回帰、パス分析）は、SPSSソフトウェア（v.26）を用いて実施されました。
選択された栽培植物サンプルは、関連する制度、国家、国際ガイドライン、およびイラン国内法に準拠していました。
表 1 には、さまざまな形質の平均、標準偏差、最小値、最大値、範囲、および表現型の変動係数 (CV) の記述統計を示します。これらの統計のうち、CV は次元がないため、属性の比較が可能です。還元糖 (40.39%)、根の乾物重 (37.32%)、根の生重 (37.30%)、糖対糖比 (30.20%)、根の容積 (30%) が最も高く、クロロフィル含量 (9.88%) も高くなっています。 ) と葉面積は最高の指数 (11.77%) を持ち、CV 値は最も低くなっています。表 1 から、総湿重量の範囲が最も広いことがわかります。ただし、この形質の CV は最も高くありません。したがって、CV などの次元のない指標を使用して、属性の変化を比較する必要があります。高い CV は、この形質の処理間に大きな差があることを示します。
ANOVA の結果では、対照群と比較して、ジベレリン酸とベンジルアデニンの葉面散布は、植物の高さ、葉の数、葉面積、根の容積、根の長さ、クロロフィル指数、生重量、乾燥重量に有意な影響を及ぼしたことが示されました。
平均値の比較から、植物成長調整剤は植物の草丈と葉数に有意な効果を示したことが示された。最も効果的な処理は、濃度200 mg/lのジベレリン酸と、濃度200 mg/lのジベレリン酸＋ベンジルアデニンであった。対照群と比較して、植物の草丈と葉数はそれぞれ32.92倍と62.76倍に増加した（表2）。
全ての変異体において、対照群と比較して葉面積が有意に増加し、ジベレリン酸濃度200 mg/lで最大の増加が観察され、89.19 cm²に達しました。結果は、成長調整剤濃度の上昇に伴い葉面積が有意に増加することを示しました（表2）。
全ての処理において、対照区と比較して根の体積と長さが有意に増加しました。ジベレリン酸とベンジルアデニンの組み合わせは最も大きな効果を示し、対照区と比較して根の体積と長さが半分に増加しました（表2）。
茎の直径と節間の長さは、それぞれ対照処理とジベレリン酸 + ベンジルアデニン 200 mg/l 処理で最高値が観測されました。
クロロフィル指数は、すべての変異体において対照群と比較して増加しました。この特性の最高値は、ジベレリン酸とベンジルアデニン200 mg/lを処理した場合に観察され、対照群より30.21%高くなりました（表2）。
結果は、この処理によって色素含有量、糖分および可溶性炭水化物の減少に大きな違いが生じたことを示しています。
ジベレリン酸とベンジルアデニンの処理により、光合成色素含有量が最大になりました。この値は、すべての変異体において対照群よりも有意に高くなりました。
結果は、すべての処理においてシェフレラ矮性植物のクロロフィル含有量が増加することを示した。しかし、この特性の最高値はジベレリン酸＋ベンジルアデニン処理で観察され、対照群より36.95%増加した（表3）。
クロロフィル b の結果はクロロフィル a の結果と完全に同様でしたが、唯一の違いはクロロフィル b の含有量が増加したことで、対照群よりも 67.15% 高かったことです (表 3)。
処理の結果、対照区と比較して総クロロフィル量が有意に増加しました。ジベレリン酸200 mg/lとベンジルアデニン100 mg/lを施用した処理区では、この特性の値が最高値となり、対照区より50%増加しました（表3）。結果によると、対照区とベンジルアデニン100 mg/lを施用した処理区で、この特性の発現率が最も高くなりました。ユリノキはカロテノイド含有量が最も高いことが示されています（表3）。
その結果、濃度200 mg/Lのジベレリン酸で処理すると、クロロフィル a の含有量がクロロフィル b に大幅に増加することが示されました (図 1)。
ジベレリン酸とベンジルアデニンがa/b Chに及ぼす影響。矮性シェフレラの割合。（GA3：ジベレリン酸、BA：ベンジルアデニン）。各図中の同じ文字は、有意差がないことを示す（P < 0.01）。
各処理区は、矮性シェフレラの生重および乾重に対して、対照区と比較して有意に高い効果を示した。ジベレリン酸＋ベンジルアデニン200 mg/Lが最も効果的で、対照区と比較して生重が138.45%増加した。対照区と比較して、ベンジルアデニン100 mg/Lを除く全ての処理区で植物の乾重が有意に増加し、ジベレリン酸＋ベンジルアデニン200 mg/L処理区ではこの特性において最も高い値を示した（表4）。
変異体のほとんどは、この点で対照と大幅に異なり、最高値は100および200 mg / lのベンジルアデニンと200 mg / lのジベレリン酸+ベンジルアデニンに属していました（図2）。
矮性シェフレラにおける可溶性炭水化物と還元糖の比率に対するジベレリン酸とベンジルアデニンの影響。（GA3：ジベレリン酸、BA：ベンジルアデニン）。各図中の同じ文字は有意差がないことを示す（P < 0.01）。
ユリノキにおける葉数と独立変数の関係をより深く理解し、実際の特性を明らかにするために、ステップワイズ回帰分析を実施した。モデルに最初に投入された変数は根の容積で、変動の44%を説明した。次に投入された変数は生根重で、これら2つの変数で葉数の変動の63%を説明した（表5）。
ステップワイズ回帰をより適切に解釈するためにパス分析を実施した（表6および図3）。葉数への最も大きな正の影響は、生根量（0.43）と関連しており、これは葉数（0.47）と正の相関関係にあった。これは、この形質が収量に直接影響を与える一方で、他の形質を介した間接的な影響は無視できること、そしてこの形質が矮性シェフレラの育種プログラムにおける選抜基準として使用できることを示唆している。根容積の直接的な影響は負であった（-0.67）。この形質は葉数に直接的な影響を与え、間接的な影響は有意ではない。これは、根容積が大きいほど葉数が少なくなることを示唆している。
図4は、根の容積と還元糖の線形回帰の変化を示しています。回帰係数によると、根の長さと可溶性炭水化物の単位変化ごとに、根の容積と還元糖はそれぞれ0.6019単位と0.311単位変化します。
成長特性のピアソン相関係数を図 5 に示します。結果は、葉の数と植物の高さ (0.379*) が最も高い正の相関と有意性を示したことを示しました。
成長率相関係数の変数間の関係を示すヒートマップ。# Y軸：1-インデックスCh.、2-節間、3-LAI、4-葉のN、5-脚の高さ、6-茎の直径。# X軸：A – インデックスH.、B – 節間距離、C – LAY、D – 葉のN、E – 脚の高さ、F – 茎の直径。
湿重量関連特性のピアソン相関係数を図6に示します。結果は、葉の湿重量と地上部乾燥重量（0.834**）、総乾燥重量（0.913**）、および根の乾燥重量（0.562*）の関係を示しています。総乾燥重量は、シュート乾燥重量（0.790**）および根乾燥重量（0.741**）と最も高い有意な正の相関関係を示しています。
生重量相関係数変数間の関係のヒートマップ。# Y軸：1 – 生葉の重量、2 – 生芽の重量、3 – 生根の重量、4 – 生葉の総重量。# X軸は、A – 生葉の重量、B – 生芽の重量、CW – 生根の重量、D – 総生重量を表します。
乾燥重量関連属性のピアソン相関係数を図 7 に示します。結果によると、葉の乾燥重量、芽の乾燥重量 (0.848**)、総乾燥重量 (0.947**)、芽の乾燥重量 (0.854**)、総乾燥質量 (0.781**) が最高の値を示しました。正の相関と有意な相関が見られます。
乾燥重量相関係数変数間の関係のヒートマップ。# Y 軸は、1 葉の乾燥重量、2 芽の乾燥重量、3 根の乾燥重量、4 総乾燥重量を表します。# X 軸: A 葉の乾燥重量、B 芽の乾燥重量、CW 根の乾燥重量、D 総乾燥重量。
色素特性のピアソン相関係数を図 8 に示します。結果によると、クロロフィル a とクロロフィル b (0.716**)、総クロロフィル (0.968**) と総色素 (0.954**)、クロロフィル b と総クロロフィル (0.868**) と総色素 (0.851**) は、総クロロフィルが総色素 (0.984**) と最も高い正の有意な相関関係を示しています。
クロロフィル相関係数変数間の関係を示すヒートマップ。# Y軸：1- チャネルa、2- チャネルb、3- a/b比、4- チャネル。総含有量、5- カロテノイド、6- 色素収量。# X軸：A- チャネルa、B- チャネルb、C- a/b比、D- チャネル。総含有量、E- カロテノイド、F- 色素収量。
矮性シェフレラは世界中で人気の観葉植物で、その成長と発育は現在大きな注目を集めています。植物成長調整剤の使用により、有意な差が見られ、すべての処理において対照群と比較して植物の高さが上昇しました。植物の高さは通常遺伝的に制御されますが、研究によると、植物成長調整剤の適用により植物の高さが上昇することも低下することも示されています。ジベレリン酸+ベンジルアデニン200 mg/Lで処理した植物の高さと葉数は最も高く、それぞれ109 cmと38.25枚に達しました。以前の研究（SalehiSardoei et al.52）およびスパティフィラム23と一致して、鉢植えのマリーゴールド、アルバス・アルバ21、デイリリー22、デイリリー、沈香、ピースリリーでも、ジベレリン酸処理による同様の植物の高さの増加が観察されました。
ジベレリン酸（GA）は、植物の様々な生理学的プロセスにおいて重要な役割を果たします。細胞分裂、細胞伸長、茎の伸長、およびサイズの増大を刺激します24。GAは、茎頂および分裂組織における細胞分裂および伸長を誘導します25。葉の変化としては、茎の厚さの減少、葉のサイズの縮小、およびより明るい緑色への変化も含まれます26。阻害因子または刺激因子を用いた研究では、内部からのカルシウムイオンがソルガムの花冠におけるジベレリンシグナル伝達経路のセカンドメッセンジャーとして作用することが示されています27。HAは、XETまたはXTH、エクスパンシン、PMEなどの細胞壁の弛緩を引き起こす酵素の合成を刺激することにより、植物の長さを増大させます28。これにより、細胞壁が弛緩して水が細胞内に入り込み、細胞が拡大します29。GA7、GA3、およびGA4の施用は、茎の伸長を増加させる可能性があります30,31。ジベレリン酸は、矮性植物では茎の伸長を促し、ロゼット植物では葉の成長と節間の伸長を遅らせます32。しかし、生殖期に入る前には、茎の長さは元の高さの4～5倍にまで伸びます33。植物におけるジベレリン酸の生合成過程は、図9にまとめられています。
植物におけるジベレリン生合成と内因性生理活性ジベレリン濃度。植物（右）とジベレリン生合成（左）の模式図。矢印は生合成経路に沿って示されたヒアルロン酸の形態に対応するように色分けされている。赤い矢印は植物器官への局在によりジベレリン濃度が低下したことを示し、黒い矢印はジベレリン濃度が上昇したことを示す。イネやスイカなど多くの植物では、ジベレリン濃度は葉の基部または下部で高い30。さらに、葉が基部から伸長するにつれて生理活性ジベレリン濃度が減少するという報告もある34。これらの場合のジベレリン濃度の正確な値は不明である。
植物成長調整剤も葉の数と面積に大きな影響を与えます。実験結果によると、植物成長調整剤の濃度を高めると、葉面積と葉数が大幅に増加することが示されました。ベンジルアデニンはカラの葉の生産量を増加させると報告されています15。本研究の結果によると、すべての処理で葉面積と葉数が改善されました。ジベレリン酸とベンジルアデニンの併用処理が最も効果的で、葉の数と面積が最も増加しました。矮性シェフレラを室内で栽培する場合、葉数が顕著に増加することがあります。
GA3 処理は、ベンジルアデニン (BA) 処理またはホルモン処理なしと比較して、節間長を増加させました。この結果は、GA が成長を促進する役割を果たしていることを考えると論理的です7。茎の成長でも同様の結果が見られました。ジベレリン酸は茎の長さを増加させましたが、直径を減少させました。しかし、BA と GA3 の併用は、茎の長さを大幅に増加させました。この増加は、BA で処理した植物またはホルモンなしで処理した植物と比較してより大きかったです。ジベレリン酸とサイトカイニン (CK) は一般に植物の成長を促進しますが、場合によっては異なるプロセスに逆の効果をもたらします35。たとえば、GA と BA で処理した植物では、胚軸の長さの増加に負の相互作用が観察されました36。一方、BA は根の容積を大幅に増加させました (表 1)。外因性 BA による根の容積の増加は、多くの植物 (例: デンドロビウムやランの種) で報告されています37,38。
すべてのホルモン処理で新葉の数が増加しました。併用処理による葉面積と茎の長さの自然な増加は、商業的に望ましいものです。新葉の数は、栄養成長の重要な指標です。外因性ホルモンは、ユリノキの商業生産では使用されていません。ただし、GAとCKの成長促進効果をバランスよく適用することで、この植物の栽培を改善するための新しい洞察が得られる可能性があります。特に、BA + GA3処理の相乗効果は、GAまたはBAを単独で投与した場合よりも高かったです。ジベレリン酸は新葉の数を増加させます。新葉が発達するにつれて、新葉の数を増やすと葉の成長が制限される可能性があります39。GAは、シンク器官からソース器官へのスクロースの輸送を改善すると報告されています40,41。さらに、多年生植物にGAを外因的に施用すると、葉や根などの栄養器官の成長が促進され、栄養成長から生殖成長への移行を防ぐことができる42。
ジベレリン酸（GA）が植物の乾物量を増加させる効果は、葉面積の増加による光合成の増加によって説明できます43。GAはトウモロコシの葉面積の増加を引き起こすことが報告されています34。その結果、BA濃度を200 mg/Lに増加させると、二次枝の長さと数、および根の容積が増加する可能性があることが示されました。ジベレリン酸は、細胞分裂や伸長を促進するなどの細胞プロセスに影響を与え、栄養成長を改善します43。さらに、ヒアルロン酸（HA）はデンプンを糖に加水分解することで細胞壁を拡張し、細胞の水分ポテンシャルを低下させます。これにより、細胞内に水が入り込み、最終的に細胞の伸長につながります44。
投稿日時: 2024年6月11日